A licenciados o ingenieros con conocimientos en algunas de las siguientes áreas: Biotecnología, Biología, Farmacia, Alimentación y/o Veterinaria. La finalidad final del máster es que el alumno cuente con una base sólida que le permita una rápida adaptación a cualquier laboratorio o empresa de procesos biotecnológicos, en la que pueda responsabilizarse tanto de las tareas cotidianas, como del desarrollo de nuevas metodologías en cualquier proceso o proyecto biotecnológico. 16 alumnos máximo, por grupo práctico 4 de Febrero de 2013 Total: 780 horas (65% experimental) Formación en IUCT: 380 horas. (280 teóricas y 100 formaciones practicas en laboratorio) Prácticas en empresa, centros de I+D o proyecto final: 400 h. De lunes a viernes de 18 a 22 h . La biotecnología como concepto . Historia de la biotecnología. Los hechos biotecnológicos más remarcables . Etapas históricas de la biotecnología . Momento actual de la biotecnología . Aplicación de la biotecnología por sector laborales y su aportación al desarrollo científico-técnico . La legislación aplicable a los procesos biotecnológicos: ley 9 / 2003 y Real Decdesafío 178/2004 . La bioética . Definición de proyecto científico: conceptos y objetivos . La financiación de proyectos científicos . Programas de Ayudas a la I + D + i empresarial . La directiva 98/44 CEE . Legislación española sobre patentes: ley 11/86 . La patentabilidad de los resultados de investigación y desarrollo . El secdesafío industrial: la no divulgación de los datos científicos . La venta de los resultados científicos: los royalties . Introducción y objetivos de la genómica . Adquisición de cepas, extracción y purificación de los ácidos nucleicos: DNA, RNA de virus, bacterias, arqueas, plantas, animales . Técnicas de cuantificación, análisis, electroforesis, adquisición de imágenes ... . Métodos de amplificación de los ácidos nucleicos: Real time PCR, RT-PCR, PCR . Marcaje de DNA y producción de sondas . Enzimas de restricción, vínculos de trozos . Métodos de clonación: Vectores y huéspedes (por expresión constitutiva o inducible) Procariotas y eucariotas (E. coli, Bacillus, Pichia, Saccaromyces.) Clonación de DNA y cDNA Métodos avanzados de clonación: topo TA, topo D, Gateway technology . Métodos de transformación: electroporación, esferoblasts con zimoliasa, competencia química con cloruro de calcio . Métodos de análisis de transformantes: PCR colonial, extracción plasmídica (mini, midi, maxi) y restricción, PCR de secuenciación . Mutagénesis dirigida y al azar . Introducción a la proteómica. Concepto de proteoma. Definición y orígenes de la proteómica. Tecnología de la proteómica. Tipo de estudios proteómicos. Proteómica de expresión, proteómica del mapa celular y proteómica funcional. . Técnicas de separación de proteínas. Electroforesis: SDS-PAGE y 2D-PAGE. Detección de proteínas en geles 2-D Análisis de imágenes. Utilización de programas informáticos. . Secuenciación de proteínas por degradación de Edman. . La espectrometría de masas. Tipo de espectrómetros. Métodos de ionización. . Identificación de proteínas Mediante imprenta peptídica (Digestió-MALDI/fingerprinting). Para imprenta peptídica sumadas a la fragmentación de secuencias peptídicas (Digestió-MALDI-MS-MS/MS). Identificación de secuencias peptídicas en muestras no complejas por cromatografía líquida combinada a espectrometría de masas con fuente nanoeletrospray (Digestió-nanoLC-MS/MS). Análisis de muestras complejas mediante cromatografía líquida multidimensional. Identificación de secuencias peptídicas por nano ES-MS/MS. Obtención de espectros de fragmentación por electrospray (ESI-MS/MS). . Análisis de las modificaciones post-traduccionales de proteínas. . Nuevas tecnologías para el análisis cuantitativo de la expresión diferencial de proteínas, utilizando marcadores fluorescentes (DIGE) e isótopos estables (ICAT, SILAC y iTRAQ) . Microbiología básica y laboratorio químico básico. . Técnicas básicas de microbiología (esterilización, producción de medios y reactivos, riesgo biológico, aislamiento y recuento, banco de cepas, revivificación de liofilizados, uv-visible). . Técnicas básicas del laboratorio químico: pH, disolventes, extracciones, evaporaciones, desecación de disolventes residuales, TLC. . Biocatálisis: enzimas comerciales, producción de enzimas, tipos de reacciones, setting de reacciones, optimización de la reacción, diseño experimental, disolventes. . Biotransformaciones: organismos salvajes y de colección, tipo de reacciones, necesidad de cofactores, células enteras, vivas, no proliferantes, optimización de medios, diseño experimental y optimización, disolventes, toxicidad. . Biorreactores: tipos de reactores, control e instrumentación, esterilización. . Procesos de extracción, purificación y caracterización de productos químicos y / o biológicos: Centrifugación, extracciones, evaporaciones, columnas hielo filtración, intercambio iónico, interacción hidrofóbica, IMAC, HPLC preparativo, PAGE, western-blot, FPLC, TLC, HPLC-MS, GC-MS, RMN, IR, UV. . Introducción a la reglativa GLP . Introducción a la reglativa GMP . Introducción a la reglativa ISO 17025 . Introducción a la reglativa ISO 9000 . Introducción a la reglativa ISO 14000 . Introducción a la reglativa ISO 22000 . Introducción a la reglativa ISO 166000 . Introducción a la bioinformática . Bases de datos moleculares . Análisis de secuencias . Genómica . SNP y QTL . Arrays de ADN y proteínas . Proteómica . Predicción de estructuras . Interacción molécula-proteína . Prevención de riesgos laborales en el laboratorio . Adaptación del alumno en el laboratorio biotecnológico . Aprendizaje de las técnicas biotecnológicas básicas . Gestión de los residuos generados en el laboratorio De las opciones se seleccionará una dependiendo de la disponibilidad del centro de trabajo que acoja al alumno y de la disponibilidad del propio alumno: . Prácticas en empresa . Prácticas en grupo experimental . Proyecto innovador de final de curso . Proyecto creación empresa innovadora